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传染性疾病标本采集方法
标本采集、 运送与报告操作规程 一、 血培养指征 患者出 现寒战, 体温超过 38℃或低体温, 怀疑血流感染时, 尤其存在以下情况时, 应抽血做细菌和真菌培养:
医院内肺炎; 留置中心静脉导管超过 72 h; 感染性心内膜炎; 骨髓炎; 有严重基础疾病、 免疫缺陷伴全身感染症状; 临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、 采血时机 一旦怀疑有血流感染可能, 应立即采血做血培养, 最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物 24 h 后, 以寒战、 发热时采集为宜。
三、 采血流程 ( 一) 消毒 1. 培养瓶消毒程序:
用消毒液消毒培养瓶橡皮塞, 待干燥后使用。
2. 皮肤消毒程序:
用消毒液从穿刺点向外画圈消毒, 至消毒区域直径达 5 cm 以上, 待消毒液挥发干燥后( 常需 30 s 以上) 穿刺采血。
( 二) 静脉穿刺和培养瓶接种 成人用 注射器无菌穿刺取血后, 排尽针头内空气, 直接注入血培养瓶, 勿换针头( 如果行第二次穿刺或用头皮针取血时, 应换针头), 先注于厌氧培养瓶, 避免注入空气, 然后注入需氧培养瓶, 轻轻混匀以防血液凝固。
近年来, 临床普遍采用负压血培养瓶, 将血从患者静脉直接吸入血培养瓶, 减少污染环节。
( 三) 注意事项 1. 检验单需注明抗菌药物使用情况、 血液采集时间和部位、 临床诊 断等患者信息。
2. 采血部位通常为肘静脉, 疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜, 切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染, 否则不应从留置静脉或动脉导管取血, 因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3. 采血次数:
对于成年患者, 应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4. 细菌性心内膜炎:
在 24 h 内取血 3 次, 每次间隔不少于 30 min;必要时次日 再做血培养 2 次。
5. 采血量:
以培养基与血液之比 10:
1 为宜, 以稀释血液中的抗菌药物、 抗体等杀菌物质。
采血量过少会明显降低阳性率。
成人每次每培养瓶采血 8~ 10 ml, 婴幼儿每次每培养瓶采血 2 ml。
四、 运送要求 1. 所有标本采集后都应立即送往实验室, 最好在 2h 内。
如果不能及时送检, 宜置于室温环境。
血培养瓶送到检验科放入培养箱前, 不应暂存于冰箱内。
2. 送检标本应正确粘贴条形码, 注明采样时间和送检时间。
3. 安全防护:
放标本的容器必须防漏, 禁止将渗漏的标本送往实验室。
五、 报告要求 ( 一) 紧急口 头( 电话) 报告 血培养出现阳性报警时, 立即进行革兰氏染色、 镜检, 并在最短时间内将结果向临床主管医生进行紧急口 头( 电话) 报告。
口 头报告包含以下内容, 并记录在案。
(1) 报告者全名 ( 或工号); (2) 报告的时间; XXXX 年 XX 月 XX 日 XX 时 XX 分( 24 小时制) (3) 所联系医生的全名 ( 或工号); (4) 报告镜检结果并强调其紧急价值; (5) 确认临床医生收到报告并复述结果。
( 二) 最终结果( 书面) 报告 (1) 无菌生长( 培养 5 天无需氧菌和厌氧菌生长); (2) 阳性培养结果( 最终鉴定结果、 最终药敏结果)。
( 三) 其他报告和记录 1. 标本被拒收时, 需即刻通知临床立即重新采血, 并记录在案。
2. 最终结果与紧急口 头报告结果不符, 需要变更时, 需立即通知临床, 同时必须在书面报告上提供正确的结果, 注明变更的内容。
3. 其他需临床注意的事项的记录, 如:
采血量不足、 标本转运时间过长、 标本采集份数不够等信息。
痰标本采集与 运送标准操作规程 一、 采集目 的 一般可用于普通细菌、 分枝杆菌、 真菌和军团菌的涂片或培养检测,经气管穿刺吸引 物可用 于厌氧菌的检测。
二、 一般原则 1. 采集标本的最佳时机应在使用 抗菌药物之前。
2. 宜采集清晨第二口 痰液。
3. 对于普通细菌性肺炎, 痰标本送检每天 1 次, 连续 2~ 3 天。
不建议 24 h 内多次采样送检, 除非痰液外观性状出 现改变。
4. 怀疑分枝杆菌感染者,
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